Спектрометрический анализ совместимости янтарной кислоты с йодинолом и метронидазолом, входящих в состав ранозаживляющего липосомального геля для животных

Методом инфракрасной спектрометрии изучена и научно обоснована целесообразность включения янтарной кислоты (сукцината) в ранозаживляющие гели. Для этого исследовано взаимодействие антисептических компонентов ранозаживляющих гелей – метронидазола и йодинола с янтарной кислотой в водной среде. У водных растворов исследованных веществ выявлены незначительные флуктуации волновых чисел пика 1642,27-1643,12 см^-1, характеризующие колебания валентных связей С‒С. Также установлены специфические пики поглощения: соединение йода с поливиниловым спиртом – 1555,22; 1232,06; 1066,00; метронидазола ‒ 2115,81, 1555,22, 1394,59, 1187,66 и 1088,40 и сукцината ‒ 2925,22, 2854,56, 2105,31, 1456,15, 1177,12, 1086,77. В результате проведенных исследований установлено, что янтарная кислота образует комплексные соединения с йодинолом и метронидазолом. Исследование ИК-спектров полученных комплексов позволяет предположить, что они образуются при взаимодействии карбоксильной группы янтарной кислоты с C‒O группами поливинилового спирта в йодиноле и R₂C=NH⁺ группами в метронидазоле.

1. Ческидова Л. В., Брюхова И. В., Григорьева Н. А. Перспективные направления создания лекарственных средств нового поколения для животных с применением биотехнологий (обзор). Ветеринарный фармакологический вестник. 2019;(2(7)):29-38. DOI: https://doi.org/10.17238/issn2541-8203.2019.2.29 EDN: EPQCVF

2. Привольнев В. В., Зубарева Н. А., Каракулина Е. В. Местное лечение раневой инфекции: антисептики или антибиотики? Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017;19(2):131-138. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=30064211 EDN: ZHXGWB

3. Краснюк (мл.) И. И., Нарышкин С. Р., Беляцкая А. В., Тарасов В. В., Степанова О. И., Краснюк И. И., Грих В. В., Овсянникова Л. В., Мезяркин Е. В., Воробьев А. Н. Метронидазол – 60 лет применения. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2020(1):82-90. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=42896071 EDN: YTCYLK

4. Нагорнова О. А., Нуруллина Л. Ф., Ахтямова З. Г., Гильманов Г. З. Биологическая активность производных имидазола. Scientific Discoveries: Proceedings of materials IV International scientific conference. Czech Republic, Karlovy Vary − Russia, Moscow, January 30-31, 2019. Czech Republic, Karlovy Vary: Skleněný Můstek – Russia, Kirov: MCNIP, 2019. С. 21-24. Режим доступа: https://kpfu.ru/staff_files/F258717817/_MKO_2019_01_N.pdf

5. Тиганов С. И., Григорьян А. Ю., Блинков Ю. Ю., Панкрушева Т. А., Мишина Е. С., Жиляева Л. В. Применение мирамистина и метронидазола в лечении экспериментальных гнойных ран. Сибирское медицинское обозрение. 2018;(1(109)):43-48. DOI: https://doi.org/10.20333/2500136-2018-1-43-48 EDN: YXPIHO

6. Морозов А. М., Беляк М. А. О возможности применения повидон-йода в хирургической практике. Амбулаторная хирургия. 2021;18(2):68-76. DOI: https://doi.org/10.21518/1995-1477-2021-18-2-68-76 EDN: DWQHQJ

7. Абдуллаев О. А., Сергиенко А. В., Ивашев М. Н. Клиническая эффективность йодинола. Международный журнал экспериментального образования. 2015;(3-2):47-48. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=22991846 EDN: TJDKBR

8. Brealey D., Brand M., Hargreaves I., Heales S., Land J., Smolenski R., A Davies N., Cooper Ch. E., Singer M. Association between mitochondrial dysfunction and severity and outcome of septic shock. Lancet. 2002;360(9328): 219-223. DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(02)09459-X

9. Protti A., Carreґ J., Frost M., Taylor V., Stidwill R., Rudiger A., Singer M. Succinate recovers mitochondrial oxygen consumption in septic rat skeletal muscle. Critical Care Medicine. 2007;35(9):2150-2155. DOI: https://doi.org/10.1097/01.ccm.0000281448.00095.4d

10. Singer M. The role of mitochondrial dysfunction in sepsis-induced multi-organ failure. Virulence 2014;5(1):66-72. DOI: https://doi.org/10.4161/viru.26907

11. Гривенникова В. Г., Виноградов А. Д. Генерация активных форм кислорода митохондриями. Успехи биологической химии. 2013;53:245-296.

12. Румянцева С. А., Силина Е. В., Чичановская Л. В., Назаров М. В., Цукурова Л. А., Коваленко А. Л., Кабаева Е. Н., Ступин В. А. Эффективность антиоксидантной энергокоррекции при инфаркте головного мозга (результаты многоцентрового рандомизированного исследования. Журнал неврологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. 2014;114(10):49-55. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=22869419 EDN: TGLTAJ

13. Wittenberger T., Schaller H. C., Hellebrand S. An expressed sequence tag (EST) data mining strategy succeeding in the discovery of new G-protein coupled receptors. Journal of Molecular Biology. 2001;307(3):799-813. DOI: https://doi.org/10.1006/jmbi.2001.4520

14. Hu J., Li T., Du X., Wu Q., Le Y.-Zh. G protein-coupled receptor 91 signaling in diabetic retinopathy and hypoxic retinal diseases. Vision research. 2017;139:59-64. DOI: https://doi.org/10.1016/j.visres.2017.05.001

15. Шаповалов К. Г., Цыденпилов Г. А., Лукьянов С. А., Трусова Е. С., Коннов В. А. Перспективы применения сукцинатов при тяжелом течении новой коронавирусной инфекции. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2020;83(10):40-43. DOI: https://doi.org/10.30906/0869-2092-2020-83-10-40-43 EDN: RQIGSB

16. Шевченко В. Д. Влияние гипоксии и сукцината на изменение биохимических показателей мышечной ткани. Актуальные проблемы биомедицины – 2021: мат-лы XXVII Всеросс. конф. молодых учёных с международ. участием. Санкт-Петербург: Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И. П. Павлова, 2021. С. 216-217. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=45802686 EDN: UMSPRK