Оптимизация клонального микроразмножения косточковых культур
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.2.189-197
Аннотация
Целью исследований являлась оптимизация клонального микроразмножения косточковых культур за счет использования улучшенных приемов. Объектами исследований на этапе введения в культуру in vitro служили меристематические апексы, собственно микроразмножения – микрочеренки, на этапе укоренения – укорененные микрочеренки, на этапе адаптации – микрорастения. Все эксперименты проведены по общепринятым методикам на примере сорта вишни степной Щедрая, сорта сливы домашней Казанская и черешни гибридной Фатеж. В результате исследований установлено: применение 10%-го раствора хлоргексидина для стерилизации исходного растительного материала косточковых культур в среднем увеличивало выживаемость апексов на 2,4 %; совместное использование в последнем пассаже пролиферации регуляторов роста 6-бензиламинопурина 0,5 мг/л, гиббереллиновой кислоты 0,2 мг/л, индолил-3-масляной кислоты (ИМК) 0,2 мг/л в питательной среде и экспериментального светодиодного импульсного фитооблучателя активизировало пролиферацию микрочеренков, увеличив коэффициент размножения косточковых культур за 6 пассажей в среднем на 0,9 шт/эксплант; добавление в питательную среду ИМК 1,0 мг/л обеспечивало увеличение укореняемости микрочеренков косточковых культур в среднем на 9,6 %. Обработка микрорастений косточковых культур на этапе адаптации методом опрыскивания 8%-ным раствором экстракта продуктов жизнедеятельности личинок большой восковой моли и использование экспериментального светодиодного импульсного фитооблучателя со смешанным спектром способствовало увеличению их приживаемости в среднем на 12,4 %. Соблюдение предложенных улучшенных приемов клонального микроразмножения косточковых культур с использованием регуляторов роста и экспериментального светодиодного импульсного фитооблучателя со смешанным спектром позволило увеличить выход стандартных адаптированных микрорастений в два раза. При этом себестоимость одного адаптированного микрорастения уменьшилась в среднем на 11,4 руб., а рентабельность получения оздоровленного материала косточковых культур увеличилась на 33,7 % и составила 160,7 %.
Ключевые слова
Об авторах
М. Г. МарковаРоссия
Маркова Марина Геннадьевна, научный сотрудник, Удмуртский научно-исследовательский институт сельского хозяйства – структурное подразделение ФГБУН «Удмуртский федеральный исследовательский центр Уральского отделения Российской академии наук»
ул. Ленина 1, с. Первомайский, Завьяловского района, 427007
Е. Н. Сомова
Россия
Сомова Елена Николаевна, старший научный сотрудник, Удмуртский научно-исследовательский институт сельского хозяйства – структурное подразделение ФГБУН «Удмуртский федеральный исследовательский центр Уральского отделения Российской академии наук»
ул. Ленина 1, с. Первомайский, Завьяловского района, 427007
Список литературы
1. Васильев А. А., Гасымов Ф. М, Галимов В. Р. Адаптивный потенциал вишни в Челябинской области. Плодоводство и виноградарство юга России. 2021;(67(1)):44–54. DOI: https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-1-67-44-54 EDN: EWFPUA
2. Супрун И. И., Винтер М. А., Лободина Е. В., Аль-Накиб Е. А., Авакимян А. О., Федорович С. В. Ключевые вопросы биотехнологии в размножении и оздоровлении садовых культур. Плодоводство и виноградарство юга России. 2021;(71(5)):96–115. DOI: https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-5-71-96-115 EDN: RKJBTC
3. Isroilova Sh. Ja. In vitro microclonal multiplication of fruit cultures. Theoretical & Applied Science. 2019;(5(73)):531–535. DOI: https://dx.doi.org/10.15863/TAS.2019.05.73.81
4. Молканова О. И., Мелещук Е. А., Ахметова Л. Р. Изучение морфогенетического потенциала некоторых представителей рода Cerasus (mill.) в культуре in vitro. Тенденции развития науки и образования. 2019;(56-13): 90–94. DOI: https://doi.org/10.18411/lj-11-2019-294 EDN: IFDSNB
5. Авакимян А. О. Питательные среды и их модификации, используемые для клонального микроразмножения вишни и черешни. Достижения науки и образования. 2023;(4(91)):10–18. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=54944735 EDN: ISTYDE
6. Ташматова Л. В., Ряго Н. В., Мельяновская А. Ю. Влияние питательных сред с различным гормональным составом на интенсивность размножения сортов вишни в культуре in vitro. Субтропическое и декоративное садоводство. 2021;(78):76–82. DOI: https://doi.org/10.31360/2225-3068-2021-78-76-82 EDN: UCRQIM
7. Aremu A. O., Amoo S. O., Fawole O. A., Buthelezi N. M., Makunga N. P., Masondo N. A., Moyo M. Applications of cytokinins in horticultural fruit crops: Trends and future prospects. Biomolecules. 2020;10(9):1–71. DOI: https://doi.org/10.3390/biom10091222
8. Макаров С. С., Кузнецова И. Б., Сунгурова Н. Р., Кульчицкий А. Н., Чудецкий А. И., Ахметова Л. Р., Акимова С. В. Клональное микроразмножение вишни обыкновенной (Prunus cerasus L.) сорта Шоколадница с использованием ростостимулирующих веществ. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2023;(6(104));86–92. DOI: https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-104-6-86-92 EDN: THEMRH
9. Осокина А. С., Колбина Л. М., Гущин А. В. Биологические основы разведения большой восковой моли (Galleria melonella L.) как источника биологически активных веществ: монография. Ижевск: Изд-во Анны Зелениной, 2019. 166 с.
10. Баранова И. А., Кондратьева Н. П., Батурин А. И., Батурина К. А. Сравнение влияния различных режимов облучения на увеличение площади листьев меристемных растений статистическими методами. Вестник НГИЭИ. 2022;(5(132)):55–64. DOI: https://doi.org/10.24412/2227-9407-2022-5-55-64 EDN: BEEQBR
11. Зеленков В. Н., Латушкин В. В., Иванова М. И., Лапин А. А., Карпачев В. В., Кособрюхов А. А., Верник П. А., Гаврилов С. В. Влияние импульсного освещения на прорастание семян некоторых овощных, масличных и лекарственных растений. Фотоника. 2020;14(5);442–461 DOI: https://doi.org/10.22184/1993-7296.FRos.2020.14.5.442.460 EDN: FBFLFC
12. Шахов В. В., Федотова И. Э., Ташматова Л. В., Мацнева О. В., Хромова Т. М. Влияние сезонного фактора на приживаемость эксплантов вишни обыкновенной в культуре in vitro. Международный научно-исследовательский журнал. 2020;(11–1):159–166. DOI: https://doi.org/10.23670/IRJ.2020.101.11.027 EDN: WSGZTO
13. Маркова М. Г., Сомова Е. Н. Регенерационная способность Cerasus fruticosa и Prunus domestica в культуре in vitro. Аграрный вестник Урала. 2021;(6(209)):43–52. DOI: https://doi.org/10.32417/1997-4868-2021-209-06-43-52 EDN: CKENBE
14. Маркова М. Г., Сомова Е. Н. Использование продуктов жизнедеятельности личинок большой восковой моли в клональном микроразмножении земляники садовой. Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020;(4):66–68. DOI: https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/4/66-68 EDN: PHNLBZ
15. Kondrateva N., Bolschin R., Krasnolutskaya M. Baturin A., Baturina K., Dukhtanova N., Kirillin N., Ovchucova S., Zaitsev P., Somova E., Markova M. Effect of irradiation on the growth and rooting of a climbing rose in vitro. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021;935:012007. DOI: https://doi.org/10.1088/1755-1315/935/1/012007
16. Markova M. G., Somova E. N. Clonal micro-propagation of berry crops: monograph. Izhevsk: izd-vo «Alkid», 2020. 102 p.
Рецензия
Для цитирования:
Маркова М.Г., Сомова Е.Н. Оптимизация клонального микроразмножения косточковых культур. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2024;25(2):189-197. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.2.189-197
For citation:
Markova M.G., Somova E.N. Optimization of clonal micropropagation of stone fruit crops. Agricultural Science Euro-North-East. 2024;25(2):189-197. (In Russ.) https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.2.189-197