Оценка исходных форм земляники на устойчивость к серой гнили в условиях Среднего Урала

Серая гниль – одно из основных вредоносных заболеваний земляники. Селекция на устойчивость к данному заболеванию по-прежнему начинается с выявления устойчивых фенотипов и использованием их в скрещиваниях. Так как земляника – полигенный, гетерозиготный вид, то для повышения результативности работы требуется проведение селекционной оценки исходных форм на устойчивость к серой гнили. В исследованиях участвовали сорта и формы селекции Свердловской селекционной станции садоводства – Дуэт, Форсаж, Гейзер, 1-14-10, 2-43-10, 3-44-10, 2-45-10, 3-45-10, 2-54-11, интродуцированные сорта Ольвия, Соловушка, ‘Belrubi’, ‘Cardinal’ и их гибридное потомство – 600 сеянцев 10 семей. Максимальное развитие серой гнили на исходных формах земляники наблюдали в годы эпифитотий – 2017, 2018, 2024. По итогам учетов только две формы 2-45-10 и 2-54-11 устойчивы к данному заболеванию. Оценка гибридного потомства проведена в 2024 году на естественном фитопатогенном фоне. По результатам селекционной оценки по выходу устойчивых к болезни сеянцев (29,0–34,1 %) выделились семьи, в происхождении обеих родительских форм которых участвовали сорта с плотными ягодами – Marmolada и Totem: 1-40-10 × 3-44-10; 2-43-10 × 2-54-11; Форсаж × 2-43-10. Использование в скрещиваниях устойчивых форм 2-45-10 и 2-54-11 (кроме семьи 2-43-10 × 2-54-11) дало более низкий выход сеянцев без признаков заболевания (6,3–16,7 %). В процессе исследований выделено 10 отборных сеянцев земляники, совмещающих в своем генотипе, кроме устойчивости к серой гнили, комплекс хозяйственно ценных признаков. Данные сеянцы представляют новый исходный материал для дальнейшей селекционной работы.

1. Шаманская Л. Д. Вредители и болезни садов Сибири. Барнаул: Новый формат, 2018. С. 133–134.

2. Petrasch S., Knapp S. J., van Kan J. A. L., Blanco-Ulate B. Grey mould of strawberry, a devastating disease caused by the ubiquitous necrotrophic fungal pathogen Botrytis cinerea. Molecular Plant Pathology. 2019;20(6):877–892. DOI: https://doi.org/10.1111/mpp.12794

3. Guo J., Wang S., XiaoYang Y., Dong R., Li Y., Mei X., Shen Y. Polyamines regulate strawberry fruit ripening by ABA, IAA, and ethylene. Plant Physiology. 2018;177(1):339–351. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.18.00245

4. Sánchez-Sevilla J. F., Vallarino J. G., Osorio S., Bombarely A., Posé D., Merchante C., et al. Gene expression atlas of fruit ripening and transcriptome assembly from RNA-Seq data in octoploid strawberry (Fragaria × ananassa). Scientific Reports. 2017;7:13737. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-017-14239-6

5. Xiao G., Zhang Q., Zeng X., Chen X., Liu S., Han Y. Deciphering the Molecular Signatures Associated With Resistance to Botrytis cinerea in Strawberry Flower by Comparative and Dynamic Transcriptome Analysis. Frontiers in Plant Science. 2022;13:888939. DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2022.888939

6. Leroch M., Plesken C., Weber R. W. S., Kauff F., Scalliet G., Hahn M. Gray mold populations in German strawberry fields are resistant to multiple fungicides and dominated by a novel clade closely related to Botrytis cinerea. Applied and Environmental Microbiology. 2013;79(1):159–167. DOI: https://doi.org/10.1128/AEM.02655-12

7. Vanti G. L., Leshem Y., Masaphy S. Resistance response enhancement and reduction of Botrytis cinerea infection in strawberry fruit by Morchella conica mycelial extract. Postharvest Biology and Technology. 2021;175:111470. DOI: https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2021.111470

8. Максимов И. В., Сингх Б. П., Черепанова Е. А., Бурханова Г. Ф., Хайруллин Р. М. Перспективы применения бактерий – продуцентов липопептидов для защиты растений (обзор). Прикладная биохимия и микробиология. 2020;56(1):19–34. DOI: https://doi.org/10.31857/S0555109920010134 EDN: AQQMZV

9. Холод Н. А., Маслиенко Л. В. Биологизированный контроль серой гнили земляники садовой в условиях усиления абиотического и антропогенного воздействий. Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. 2018;14:179–183. DOI: https://doi.org/10.30679/2587-9847-2018-14-179-183 EDN: LBLPVZ

10. Petrasch S., Mesquida-Pesci S. D., Pincot D. D. A., Feldmann M. J., López C. M., Famula R.,et al. Genomic prediction of strawberry resistance to postharvest fruit decay caused by the fungal pathogen Botrytis cinerea. G3: Genes. Genomes. Genetics. 2022;12(1):jkab378. DOI: https://doi.org/10.1093/g3journal/jkab378

11. Храбров И. Э., Антонова О. Ю., Шаповалов М. И., Семёнова Л. Г. Устойчивость земляники к основным грибным фитопатогенам: R-гены и их ДНК-маркеры. Биотехнология и селекция растений. 2019;2(3):30–40. DOI: https://doi.org/10.30901/2658-6266-2019-3-03 EDN: ZAKLPL

12. Лыжин А. С., Лукъянчук И. В. Молекулярный скрининг аллелей резистентности 08 TO-F, RCA2 и RPF1 в гибридном потомстве земляники садовой для идентификации форм с комплексной устойчивостью к грибным патогенам. Письма в Вавиловский журнал генетики и селекции. 2024;10(2):105–110. DOI: https://doi.org/10.18699/letvjgb-2024-10-12 EDN: BHUUFJ

13. Hébert C., Charles M. T., Gauthier L., Willemot C., Khanizadeh S., Cousineau J. Strawberry Proanthocyanidins: biochemical markers for Botritis cinerea resistance and shelf-life predictability. Acta Horticulturae. 2002;567:143. DOI: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2002.567.143

14. Зубов А. А. Теоретические основы селекции земляники. Мичуринск, 2004. С. 45–121.

15. Кичина В. В. Генетика и селекция ягодных культур. М.: Колос, 1984. С. 223–250.