Сравнительная характеристика биохимических параметров у диких и разводимых на промышленных зверофермах лисиц (Vulpes vulpes L., 1758) с использованием методов PCA и корреляционного анализа

Проведено комплексное исследование биохимического профиля диких и разводимых на промышленных зверофермах лисиц (Vulpes vulpes L., 1758) разных окрасов (серебристо-черных и красных «Огнёвка вятская») с применением методов главных компонент (PCA) и корреляционного анализа. Анализ выявил существенные метаболические различия между группами, связанные с эффектами доместикации и половым диморфизмом. Метод PCA показал, что у диких лисиц факторная структура биохимических параметров более распределена (82,1 % дисперсии объясняется тремя компонентами), тогда как у разводимых на промышленных зверофермах, особенно красных лисиц «Огнёвка вятская», наблюдается консолидация метаболических процессов (до 70,1 % дисперсии в первой компоненте). У диких особей выявлены специфические связи: положительные нагрузки АсАТ с креатинином (rs = 0,823; p<0,01) у самок и сильная положительная корреляция АсАТ с альбумином (rs = 0,985; p<0,01) у самцов, отражающие адаптивные механизмы в природных популяциях. Разводимые на промышленных зверофермах лисицы демонстрируют более упорядоченный метаболизм с сильными корреляциями между печеночными ферментами (АлАТ-АсАТ: rs = 0,975; p<0,01 у красных самок). Особенно показательно различие в азотистом обмене: у диких самок обнаружена уникальная отрицательная корреляция мочевины с креатинином (rs = -0,891; p<0,01), тогда как у разводимых на зверофермах особей эти параметры положительно связаны. Исследование подтверждает, что процесс доместикации приводит к реорганизации метаболических сетей, снижая их вариабельность и усиливая интеграцию ключевых физиологических параметров. Выявленные различия отражают адаптацию диких лисиц к изменчивым природным условиям и специализацию разводимых на промышленных зверофермах особей в стабильной среде содержания и кормления. Полученные данные важны для понимания физиологических последствий одомашнивания зверей и могут быть использованы при разработке критериев оценки статуса животных, разводимых на специализированных зверофермах.

1. Срослова Г. А., Постнова М. В., Зимина Ю. А. Особенности адаптации живых организмов. Вестник Волгоградского государственного университета. Серия 11: Естественные науки. 2017;7(4):32–38. DOI: https://doi.org/10.15688/jvolsu11.2017.4.5 EDN: XPSPTN

2. Kokore B. A., Bleyere H. M., Kamagate S., Yapo P. A. Blood biochemical parameters exploration in broilers and local chickens in Korhogo, Côte d'Ivoire. American Journal of Food and Nutrition, 2021;9(2):82–86. DOI: https://doi.org/10.12691/ajfn-9-2-4

3. Aguirre A. A. Wild canids as sentinels of ecological health: a conservation medicine perspective. Parasites & Vectors. 2009;2(Suppl 1):S7. DOI: https://doi.orsg/10.1186/1756-3305-2-S1-S7

4. Akbaba B., Kucukyildirim S., Ünal H. Comparison of the red fox gut microbiota among different habitat types in southern Anatolia. Mammal Research. 2025;70:175–182. DOI: https://doi.org/10.1007/s13364-025-00783-4

5. Kuznetsov Y. E., Lunegov A. M., Ponamarev V. S., Romashova E. B. Indicators of biochemical blood parameters of minks (Mustela vison) with shed keeping in the Tver region climate. Journal of Agriculture and Environment. 2022;7(27):1–4. DOI: https://doi.org/10.23649/jae.2022.27.7.002

6. Radkowska I., Herbut E. Hematological and biochemical blood parameters in dairy cows depending on the management system. Animal Science Papers and Reports. 2014;32(4):317–325. URL: https://www.igbzpan.pl/uploaded/FSiBundleContentBlockBundleEntityTranslatableBlockTranslatableFilesElement/filePath/327/str317-326.pdf

7. Березина Ю. А., Беспятых О. Ю. Сюткина А. С., Плотников И. А., Окулова И. И., Перевозчикова М. А., Домский И. А. Биохимические показатели крови помесных лисиц цветового типа красная снежная в зависимости от возраста. Кролиководство и звероводство. 2024;(2):41–48. DOI https://doi.org/10.52178/00234885_2024_2_41 EDN: VVNZPO

8. Березина Ю. А., Кокорина А. Е., Плотников И. А., Окулова И. И., Бельтюкова З. Н., Кошурникова М. А., Беспятых О. Ю. Сезонные особенности гематологических показателей крови у взрослого вуалевого песца в условиях Волго-Вятского региона. Дальневосточный аграрный вестник. 2019;(1):32–37. DOI: https://doi.org/10.22450/1999-6837-2019-1-32-37 EDN: ZDPODB

9. Берестов В. А., Кожевникова Л. К. Ферменты крови пушных зверей. Л.: Наука: Ленингр. отд-ние, 1981. 184 с. Режим доступа: https://search.rsl.ru/ru/record/01001050524

10. Benn D. M., McKeown D. B., Lumsden J. H. Hematology and biochemistry reference values for the ranch fox. Canadian Journal of Veterinary Research. 1986;50(1):54–58. URL: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC1255159/

11. Crooks K. R. S., Scott C. A., Bowen L., van Vuren D. Hematology and serum chemistry of the island fox on Santa Cruz Island. Journal of Wildlife Diseases. 2000;36(2):397–404. DOI: https://doi.org/10.7589/0090-3558-36.2.397

12. Gelli D., Gerardi G., Lai O., Stefani A., Contiero B., Segato S. Hematologic and biochemistry reference intervals for rescued red foxes (Vulpes vulpes). Journal of Zoo and Wildlife Medicine. 2023;54(2):374–378. DOI: https://doi.org/10.1638/2022-0131

13. Inoue H., Clifford D. L., Vickers T. W., Coonan T. J., Garcelon D. K., Borsjesson D. L. Biochemical and hematological reference intervals for the endangered island fox (Urocyon littoralis). Journal of Wildlife Diseases. 2012;48(3):583–592. DOI: https://doi.org/10.7589/0090-3558-48.3.583

14. Lescano J., Quevedo M., Villalobos M., Gavidia C. Hematology and serum biochemistry of free-ranging and captive Sechuran foxes (Lycalopex sechurae). Veterinary Clinical Pathology. 2018;47(1):29–37. DOI: https://doi.org/10.1111/vcp.12568

15. Rudd J., Clifford D., Richardson D., Cyphers B., Westall T., Kelly E. et al. Hematologic and serum chemistry values of endangered San Joaquin kit foxes (Vulpes macrotis mutica) with sarcoptic mange. Journal of Wildlife Diseases. 2019;55(2):410–415. DOI: https://doi.org/10.7589/2017-10-270

16. Talukdar A., Ghosal S., Raina P. Hematological and blood chemistry values in red fox (Vulpes vulpes) from Ladakh, India. Bhartiya Krishi Anusandhan Patrika. 2021;36(2):156–157. DOI: https://doi.org/10.18805/BKAP319

17. Di Cataldo S., Hidalgo-Hermoso E., Sacristán I., Cevidanes A., Napolitano C., Hernández C. V. et al. Hemoplasmas are endemic and cause asymptomatic infection in the endangered Darwin’s fox (Lycalopex fulvipes). Appl Environ Microbiol. 2020;86(12):1–16. DOI: https://doi.org/10.1128/AEM.00779-20

18. Mohamed A. E. A., Mohamed M. M., Fawaz M. M., Fereig R. M. Diversity of external and gastrointestinal parasites and the associated clinical, hematological, and biochemical findings in red fox (Vulpes vulpes) of Egyptian Wilderness. German Journal of Veterinary Research. 2024;4(3):110–125. DOI: https://doi.org/10.51585/gjvrs.2024.3.0103

19. Marks C. Hematological and biochemical responses of red foxes (Vulpes vulpes) to different capture methods and shooting. Animal Welfare. 2010;19(3):223–234. DOI: https://doi.org/10.1017/S0962728600001603