Однократная иммунизация аттенуированным штаммом «Волгоград/14с» вируса АЧС не защищает поросят от заражения гомологичным штаммом «Ставрополь 01/08»

После заноса вируса АЧС в 2007 году в Грузию болезнь распространилась по многим странам Европы и Азии. С момента заноса АЧС регистрировали в 42 странах Евразийского континента. Для искоренения болезни используют жесткие противоэпизоотические мероприятия, включающие в себя политику стемпинг аут, запрет на ввоз и вывоз всех видов животных, запрет на торговлю и другие мероприятия. С целью профилактики заболевания были разработаны и экспериментально проверены кандидатные инактивированные, живые ослабленные, субъединичные, векторные и ДНК-вакцины, испытания которых во многих случаях не увенчались успехом. Цель работы  – изучить иммунобиологические и протективные свойства аттенуированного штамма вируса АЧС «Волгоград/14с» против заражения гомологичным вирулентным штаммом «Ставрополь 01/08» in vivo. Однократное внутримышечное введение аттенуированного штамма  «Волгоград/14с» в дозе 10^3,0 ГАЕ₅₀/см³ шести подсвинкам вызывало 1–4-дневную гипертермию (40,0–40,8 ^oC) без развития других клинических признаков. Виремию в крови инокулированных подсвинков выявляли с 3–7-го дня в титрах 2,0-3,0 lg ГАЕ₅₀/см³ с максимальным накоплением 3,75 lg ГАЕ50/см3 на 10-й день, снижением на 14–21-й день до 1,75–2,75 lg ГАЕ₅₀/см³ и утрате инфекционности к 28-му дню. С 10-го дня в сыворотке крови привитых животных обнаруживали вирусоспецифические антитела к вирусу АЧС. Контрольное заражение гомологичным вирулентным штаммом «Ставрополь 01/08» вызывало развитие клинических признаков АЧС и рост виремии в крови до 6,0–7,5 lg ГАЕ₅₀/см³ у всех поросят опытной и контрольной групп. Болезнь протекала сверхостро, остро, подостро и хронически с гибелью всех контрольных и 5 из 6 подопытных подсвинков с характерными для АЧС клиническими признаками и патологоанатомическими изменениями.

1. Blome S., Franzke K., Beer M. African swine fever – A review of current knowledge. Virus Research. 2020;287:198099. DOI: https://doi.org/10.1016/j.virusres.2020.198099

2. Tran X. H., Le T. T. P., Nguyen Q. H., Do T. T., Nguyen V. D., Gay C. G., et al. African swine fever virus vaccine candidate ASFV-G-ΔI177L efficiently protects European and native pig breeds against circulating Vietnamese field strain. Transboundary and Emerging Diseases. 2022;69(4):e497–e504. DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14329

3. Chathuranga K., Lee J-S. African swine fever virus (ASFV): Immunity and vaccine development. Vaccines. 2023;11(2):199. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines11020199

4. Argilaguet J. M., Perez-Martin E., Nofrarias M., Gallardo C., Accensi F., Lacasta A., et al. DNA vaccination partially protects against African swine fever virus lethal challenge in the absence of antibodies. PLos One. 2012;7(9):e40942. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0040942

5. Cadenas-Fernández E., Sánchez-Vizcaíno J. M., Born E., Kosowska A., Kilsdonk E., Fernández-Pacheco P. et al. High Doses of Inactivated African Swine Fever Virus Are Safe, but Do Not Confer Protection against a Virulent Challenge. Vaccines (Basel). 2021;9(3):242. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines9030242

6. Blome S., Gabriel C., Beer M. Modern adjuvants do not enhance the efficacy of an inactivated African swine fever virus vaccine preparation. Vaccine. 2014;32(31):3879–3882. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.05.051

7. Stone S., Hess W. Antibody response to inactivated preparations of African swine fever virus in pigs. American Journal of Veterinary Research. 1967;28:475–481.

8. Pérez-Núñez D., Sunwoo S. Y., García-Belmonte R., Kim C., Vigara-Astillero G., Riera E. et al. Recombinant African swine fever virus Arm/07/CBM/c2 lacking CD2v and A238L Is attenuated and protects pigs against virulent Korean Paju strain. Vaccines. 2022;10(12):1992. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines10121992

9. Abkallo H. M., Svitek N., Oduor B., Awino E., Henson S. P., Oyola S. O. et al. Rapid CRISPR/Cas9 editing of genotype IX African swine fever virus circulating in eastern and central Africa. Frontiers in Genetics. 2021;12:733674. DOI: https://doi.org/10.3389/fgene.2021.733674

10. Borca M. V., Holinka L. G., Berggren K. A., Gladue D. P. CRISPR-Cas9, a tool to efficiently increase the development of recombinant African swine fever viruses. Scientific Reports. 2018;8(1):3154. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-21575-8

11. Krug P. W., Holinka L. G., O'Donnell V., Reese B., Sanford B., Fernandez-Sainz I. et al. The progressive adaptation of a Georgian isolate of African swine fever virus to Vero cells leads to a gradual attenuation of virulence in swine corresponding to major modifications of the viral genome. Journal of Virology. 2015;89(4):2324–2332. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.03250-14

12. Vlasov М. Е., Nefedeva М. V., Kudryashov D. A., Titov I. A. Determination of the 1L-5-6L MGF110 genes influence on the biological properties of the African swine fever virus (Asfarviridae; Asfivirus) “Volgograd/14C” in vivo. Acta Veterinaria. 2024;74(2):210–221. DOI: https://doi.org/10.2478/acve-2024-0014

13. Sereda A. D., Vlasov M. E., Koltsova G. S., Morgunov S. Y., Kudrjashov D. A., Sindryakova I. P. et al. Immunobiological characteristics of the attenuated African swine fever vitus strain Katanga-350. Viruses. 2022;14(8):1630. DOI: https://doi.org/10.3390/v14081630

14. Borca M., Ramirez-Medina E., Silva E., Vuono E., Rai A., Pruitt S. et al. Development of a Highly Effective African Swine Fever Virus Vaccine by Deletion of the I177L Gene Results in Sterile Immunity against the Current Epidemic Eurasia Strain. Journal Virology. 2020;94(7):e02017-19. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.02017-19

15. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition. Washington, DC: The National Academies Press, 2011. 246 p. URL: https://grants.nih.gov/grants/olaw/guide-for-the-care-and-use-of-laboratory-animals.pdf

16. King K., Chapman D., Argilaguet J. M., Fishbourne E., Hutet E., Cariolet R. et al. Protection of European domestic pigs from virulent African isolates of African swine fever virus by experimental immunisation. Vaccine. 2011;29(28): 4593–4600. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.04.052

17. Fernández-Pinero J., Gallardo C., Elizalde M., Robles A., Gómez C., Bishop R. et al. Molecular diagnosis of African Swine Fever by a new real-time PCR using universal probe library. Transboundary and Emerging Diseases. 2013;60(1):48–58. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1865-1682.2012.01317.x

18. Sereda A. D, Namsrayn S., Balyshev V. M., Vlasov M. E, Sindryakova I. P., Koltsova G., Kolbasov D. V. Seroimmunotyping of African swine fever virus. FrontiersMicrobiology. 2023;14:1225587. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1225587

19. Моргунов Ю. П., Моргунов С. Ю., Бурмакина Г. С., Малоголовкин А. С., Кушнир С. Д., Титов И. А., Мима К. А., Колбасов Д. В. Штамм вируса африканской чумы свиней 8-го серотипа, адаптированный к перевиваемой культуре клеток COS-1: пат. № 2575079 Российская Федерация. № 2014152959/10: заяв. 25.12.2014; опубл. 10.02.2016. Бюл. №4. 6 с. Режим доступа: https://patents.s3.yandex.net/RU2575079C1_20160210.pdf

20. Sereda A. D., Vlasov M. E., Koltsova G. S., Morgunov S. Y., Kudrjashov D. A., Sindryakova I. P. et al. Immunobiological Characteristics of the Attenuated African Swine Fever Virus Strain Katanga-350. Viruses. 2022;14(8):1630. DOI: https://doi.org/10.3390/v14081630

21. Vlasov M. E., Sindryakova I. P., Kudrjashov D. A., Morgunov S. Y., Kolbasova O. L., Lyska V. M. et al. Inoculation with ASFV-Katanga-350 Partially Protects Pigs from Death during Subsequent Infection with Heterologous Type ASFV-Stavropol 01/08. Viruses. 2023;15(2):430. DOI: https://doi.org/10.3390/v15020430

22. Vlasov M., Sindryakova I., Kudryashov D., Morgunov S., Kolbasova O., Lyska V., et al. Administration Routes and Doses of the Attenuated African Swine Fever Virus Strain PSA-1NH Influence Cross-Protection of Pigs against Heterologous Challenge. Animals. 2024;14(9):1277. DOI: https://doi.org/10.3390/ani14091277

23. Abrams C. C., Goatley L., Fishbourne E., Chapman D., Cooke L., Oura Ch. A. et al. Deletion of virulence associated genes from attenuated African swine fever virus isolate OUR T88/3 decreases its ability to protect against challenge with virulent virus. Virology. 2013;443(1):99–105. DOI: https://doi.org/10.1016/j.virol.2013.04.028

24. Leitão A., Cartaxeiro C., Coelho R., Cruz B., Parkhouse R. M. E., Portugal F. C. et al. The non-haemadsorbing African swine fever virus isolate ASFV/NH/P68 provides a model for defining the protective anti-virus immune response. Journal of General Virology. 2001;82(3):513–523. DOI: https://doi.org/10.1099/0022-1317-82-3-513

25. Yang X., Zhang X., Zhao X., Yuan M., Zhang K., Dai J. et al. Antibody-Dependent Enhancement: ″Evil″ Antibodies Favorable for Viral Infections. Viruses. 2022;14(8):1739. DOI: https://doi.org/10.3390/v14081739

26. Chen W., Zhao D., He X., Liu R., Wang Z., Zhang X. et al. A seven-gene-deleted African swine fever virus is safe and effective as a live attenuated vaccine in pigs. Science China Life Sciences. 2020;63:623–634. DOI: https://doi.org/10.1007/s11427-020-1657-9

27. O’Donnell V., Holinka L. G., Gladue D. P., Sanford B., Krug P. W., Lu X. et al. African Swine Fever Virus Georgia Isolate Harboring Deletions of MGF360 and MGF505 Genes Is Attenuated in Swine and Confers Protection against Challenge with Virulent Parental Virus. Journal of Virology. 2015;89(11):6048–6056. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.00554-15

28. Koltsov A., Sukher M., Krutko S., Belov S., Korotin A., Rudakova S. et al. Construction of the First Russian Recombinant Live Attenuated Vaccine Strain and Evaluation of Its Protection Efficacy Against Two African Swine Fever Virus Heterologous Strains of Serotype 8. Vaccines (Basel). 2024;12(12):1443. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines12121443

29. Zheng L., Yan Z., Qi X., Ren J., Ma Z., Liu H. et al. The Deletion of the MGF360-10L/505-7R Genes of African Swine Fever Virus Results in High Attenuation but No Protection Against Homologous Challenge in Pigs. Viruses. 2025;17(2):283. DOI: https://doi.org/10.3390/v17020283

30. Sawant J., Patil A., Kurle S. A Review: Understanding Molecular Mechanisms of Antibody-Dependent Enhancement in Viral Infections. Vaccines (Basel). 2023;11(7):1240. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines11071240

31. Gaudreault N. N., Richt J. A. Subunit Vaccine Approaches for African Swine Fever Virus. Vaccines (Basel). 2019;7(2):56. DOI: https://doi.org/10.3390/vaccines7020056

32. Yang X., Sun E., Zhai H., Wang T., Wang S., Gao Yu. et al. The antibodies against the A137R protein drive antibody-dependent enhancement of African swine fever virus infection in porcine alveolar macrophages. Emerging Microbes & Infections. 2024;13(1):2377599. DOI: https://doi.org/10.1080/22221751.2024.2377599