Применение микросателлитов в популяционно-генетических исследованиях северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор)
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.4.525-537
Аннотация
За последние несколько десятилетий теоретические, аналитические и методологические достижения в генетике произвели революцию в популяционно-генетических исследованиях, обеспечив лучшее понимание эволюционных процессов, истории популяций и видов. Методологически такой прогресс во многом обусловлен изобретением технологии полимеразной цепной реакции и внедрением маркеров микросателлитной ДНК. В настоящем обзоре обсуждаются тенденции в использовании микросателлитных маркеров как эффективных инструментов для решения широкого спектра задач в популяционной генетике, природоохранной и эволюционной биологии единственного вида рода Rangifer – северного оленя. На основании проведенного анализа экспериментальных и обзорных публикаций (78 источников) научных коллективов Российской Федерации, Канады, Соединенных Штатов Америки, Ирландии, Японии, Китая, Норвегии, обобщены первые работы успешной амплификации микросателлитов северных оленей, а также продемонстрирована значимость данных маркеров для изучения внутрипопуляционного и межпопуляционного разнообразия, дифференциации, генетических взаимоотношений, воздействия антропогенных факторов на генетическое разнообразие и генетическую изоляцию популяций, а также для реконструкции эволюционной истории различных форм северного оленя.
При поддержке: работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л. К. Эрнста» (тема № FGGN-2024-0018, № 124051400016-6).
Об авторах
В. Р. Харзинова
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л. К. Эрнста»
Россия
Россия
Харзинова Вероника Руслановна, кандидат биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории ДНК-технологий в животноводстве
п. Дубровицы 60, г.о. Подольск, Московская область, 142132
Н. А. Зиновьева
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л. К. Эрнста»
Россия
Россия
Зиновьева Наталия Анатольевна, академик РАН, профессор, доктор биол. наук, директор
п. Дубровицы 60, г. о. Подольск, Московская область, 142132
Список литературы
1. Омашева М. Е., Аубакирова К. П., Рябушкина Н. А. Молекулярные маркеры. причины и последствия ошибок генотипирования. Биотехнология. Теория и практика. 2013;(4):20–28. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25612911 EDN: VOMRFP
2. Кийко Е. И. Принципы маркерной селекции в молочном скотоводстве. Вестник Тамбовского университета. Серия: естественные и технические науки. 2010;15(1):134–135. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=14805077 EDN: MLZMAJ
3. Litt M. A., Luty J. A. Hypervariable microsatellite revealed by in vitro amplification of a dinucleotide repeat within the cardiac muscle actin gene. American Journal of Human Genetics. 1989;44(3):397–401
4. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nucleic Acids Research. 1989;17(16):6463–6471. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/17.16.6463
5. Weber J. L., May P. E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. American Journal of Human Genetics. 1989;44(3):388–396.
6. Edwards A., Civitello A., Hammond H. A., Caskey C. T. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats. The American Journal of Human Genetics. 1991;49(4):746–775.
7. Jeffreys A. J., Royle N. J., Wilson V., Wong Z. Spontaneous mutation rates to new length alleles at tandemrepetitive hypervariable loci in human DNA. Nature. 1988;332(6161):278–281. DOI: https://doi.org/10.1038/332278a0
8. Abdul-Muneer P. M. Application of microsatellite markers in conservation genetics and fisheries management: recent advances in population structure analysis and conservation strategies. Genetics Research International. 2014;2014(1):691759. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/691759
9. Hoffman J. I., Amos W. Microsatellite genotyping errors: detection approaches, common sources and consequences for paternal exclusion. Molecular Ecology. 2005;14(2):599–612. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02419.x
10. Rajendrakumar P., Biswal A. K., Balachandran S. M., Srinivasarao K., Sundaram R. M. Simple sequence repeats in organellar genomes of rice: frequency and distribution in genic and intergenic regions. Bioinformatics. 2007;23(1):1–4. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl547
11. Kalia R. K., Rai M. K., Kalia S., Singh R., Dhawan A. K. Microsatellite markers: an overview of the recent progress in plants. Euphytica. 2011;177:309–334. DOI: https://doi.org/10.1007/s10681-010-0286-9
12. Bishop M. D., Kappes S. M., Keele J. W., Stone R. T., Sunden S. L., Hawkins G. A., Toldo S. S., Fries R., Grosz M. D., Yoo J. A genetic linkage map for cattle. Genetics. 1994;136(2):619–639. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/136.2.619
13. Bishop M. D., Hawkins G. A., Keeler C. L. Use of DNA markers in animal selection. Theriogenology. 1995;43(1):61–70. DOI: https://doi.org/10.1016/0093-691X(94)00018-P
14. Peakall R., Gilmore S., Keys W., Morgante M., Rafaske A. Cross-species amplification of soybean (Glycine max) simple sequence repeat (SSRs) within the genus and other legume genera: implications for the transferability of SSRs in plants. Molecular Biology and Evolution. 1998;15(10):1275–1287. DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a025856
15. Baron E. E., Mário L. M., Verneque R. S., Coutinho L. L. Parentage testing and effect of misidentification on the estimation of breeding value in Gir cattle. Genetics and Molecular Biology. 2002;25(4):389–394. DOI: https://doi.org/10.1590/S1415-47572002000400006
16. Kuleung C., Baenziger P. S., Dweikat I. Transferability of SSR markers among wheat, rye and triticale. Theoretical and Applied Genetics. 2004;108:1147–1150. DOI: https://doi.org/10.1007/s00122-003-1532-5
17. Yang W., Kang X., Yang Q., Lin Y., Fang M. Review on the development of genotyping methods for assessing farm animal diversity. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2013;(4):2. DOI: https://doi.org/10.1186/2049-1891-4-2
18. Tabbasam N., Zafar Y., Mehboob-ur-Rahman. Pros and cons of using genomic SSRs and EST-SSRs for resolving phylogeny of the genus Gossypium. Plant Systics and Evolution. 2014;300:559–575. DOI: https://doi.org/10.1007/s00606-013-0891-x
19. Hasan N., Choudhary S., Naaz N., Sharma N., Laskar R. A. Recent advancements in molecular markerassisted selection and applications in plant breeding programmes. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. 2021;19(1):128. DOI: https://doi.org/10.1186/s43141-021-00231-1
20. Mohindra V., Mishra A., Palanichamy M., Ponniah A. G. Cross-species amplification of Catla catla microsatellite locus in Labeo rohita. Indian Journal of Fisheries. 2001;48(1):103–108. URL: https://epubs.icar.org.in/index.php/IJF/article/view/8492/3463
21. Carneiro V. M. L., Santini L., Diniz A. L., de Freitas Munhoz C. Microsatellite markers: what they mean and why they are so useful. Genetics and Molecular Biology. 2016;39(3):312–328. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-4685-gmb-2016-0027
22. Pei J., Bao P., Chu M., Liang C., Ding X., Wang H., Wu X., Guo X., Yan P. Evaluation of 17 microsatellite markers for parentage testing and individual identification of domestic yak (Bos grunniens). PeerJ. 2018;6:e5946. DOI: https://doi.org/10.7717/peerj.5946
23. Гладырь Е. А., Горелов П. В., Маурчева В. Н., Шахин А. В., Чинаров Ю. И., Зиновьева Н. А. Оценка результативности тест-системы на основе микросателлитов в проведении ДНК-экспертизы крупного рогатого скота. Достижения науки и техники АПК. 2011;(8):51–54. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=16690837 EDN: OBGJWR
24. Zhao J., Zhu C., Xu Z., Jiang X., Yang S., Chen A. Microsatellite markers for animal identification and meat traceability of six beef cattle breeds in the Chinese market. Food Control. 2017;78:469–475. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2017.03.017
25. Kang S. W., Lee S. Y., Chio D. H., Kang H. J., Hu M. B., Yang Y. J. Statistical analysis of alleles in 4703 thoroughbred racing horses using fifteen microsatellite DNA markers. Journal of Animal Science. 2016;94:88. DOI: https://doi.org/10.2527/jas2016.94supplement488x
26. Калинкова Л. В. Молекулярно-генетическая экспертиза достоверности происхождения племенных лошадей. Эффективное животноводство. 2018;(6(145)):70–72. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35554714 EDN: XYLHVZ
27. Зиновьева Н. А., Харзинова В. Р., Логвинова Т. И., Гладырь Е. А., Сизарева Е. И., Чинаров Ю. И. Микросателлитные профили как критерии определения чистопородности и оценки степени гетерогенности подборов родительских пар в свиноводстве. Сельскохозяйственная биология. 2011;46(6):47–53.
28. Radko A., Podbielska A. Microsatellite DNA Analysis of genetic diversity and parentage testing in the popular dog breeds in Poland. Genes (Basel). 2021;12(4):485. DOI: https://doi.org/10.3390/genes12040485
29. Koskinen M. T., Bredbacka P. Assessment of the population structure of five Finnish dog breeds with microsatellites. Animal genetics. 2000;31(5):310–317. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2052.2000.00669.x
30. Денискова Т. Е., Селионова М. И., Гладырь Е. А., Доцев А. В., Бобрышова Г. Т., Костюнина О. В., Брем Г., Зиновьева Н. А. Изменчивость микросателлитов в породах овец, разводимых в России. Сельскохозяйственная биология. 2016;51(6):801–810. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=27639405 EDN: XGVQYJ
31. Weising K., Winter P., Huttel B., Kahl G. Microsatellite markers for molecular breeding. Journal of Crop Production. 1997;1(1):113–143. DOI: https://doi.org/10.1300/j144v01n01_06
32. Røed K. H., Ferguson K. H., Crête M. A. D., Bergerud T. A. Genetic variation in transferrin as a predictor for differentiation and evolution of caribou from eastern Canada. Rangifer. 2010;11:65–74. DOI: https://doi.org/10.7557/2.11.2.979
33. Zhai J. C., Liu W. S., Yin Y. J., Xia Y. L., Li H. P. Analysis on genetic diversity of reindeer (Rangifer tarandus) in the Greater Khingan Mountains using microsatellite markers. Zoological Studies. 2017;56:e11. DOI: https://doi.org/10.6620/ZS.2017.56-11
34. Крутикова А. А., Пегливанян Г. К. Динамика убойной массы домашних северных оленей полуострова Ямал в зависимости от половой и возрастной принадлежности. Международный научно-исследовательский журнал. 2023;(12(138)). DOI: https://doi.org/10.23670/IRJ.2023.138.28 EDN: VYCUDF
35. Gordon B. Rangifer and man: An ancient relationship. Rangifer. 2003;23(14):15–28. DOI: https://doi.org/10.7557/2.23.5.1651
36. Харзинова В. Р., Денискова Т. Е., Сермягин А. А., Доцев А. В., Соловьева А. Д., Зиновьева Н. А. Эволюция методов оценки биоразнообразия северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2017;52(6):1083–1093. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.6.1083rus EDN: YLSUZR
37. Брызгалов Г. Я., Игнатович Л. С. Селекционно-племенная работа в северном оленеводстве (к смене парадигмы развития). Генетика и разведение животных. 2021;(4):29–36. DOI: https://doi.org/10.31043/2410-2733-2021-4-29-36 EDN: OOKGFF
38. Hall R. J. Deer. In: Cockett N. E., Kole C. (eds) Genome mapping and genomics in domestic animals. Genome mapping and genomics in animals. Springer, Berlin, Heidelberg, 2009. Vol. 3. Chapter 4. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-540-73835-0
39. Polziehn R. O., Strobeck C. Phylogeny of wapiti, red deer, sika deer, and other North American cervids as determined from mitochondrial DNA. Molecular Phylogenetics and Evolution. 1998;10(2):249–258. DOI: https://doi.org/10.1006/mpev.1998.0527
40. Ludt C. J., Schroeder W., Rottmann O., Kuehn R. Mitochondrial DNA phylogeography of red deer (Cervus elaphus). Molecular phylogenetics and evolution. 2004;31(3):1064–1083. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ympev.2003.10.003
41. Cote S. D., Dallas J. F., Marshall F., Irvine R. J., Langvatn R., Albon S. D. Microsatellite DNA evidence for genetic drift and philopatry in Svalbard reindeer. Molecular Ecology. 2002;11(10):1923–1930. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2002.01582.x
42. Deniskova T. E., Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva А. D., Romanenko Т. М., Yuzhakov А. А., Layshev К. А., Brem G., Zinovieva N. A. Genetic characteristics of regional populations of Nenets reindeer breed (Rangifer tarandus). Agricultural Biology. 2018;53(6):1152–1161. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.6.1152eng
43. Ju Y., Liu H., Rong M., Zhang R., Dong Y., Zhou Y., Xing X. Genetic diversity and population genetic structure of the only population of Aoluguya Reindeer (Rangifer tarandus) in China. Mitochondrial DNA. Part A, DNA mapping, sequencing, and analysis. 2019;30(1):24–29. DOI: https://doi.org/10.1080/24701394.2018.1448081
44. Anderson D. G., Kvie K. S., Davydov V. N., Røed K. H. Maintaining genetic integrity of coexisting wild and domestic populations: Genetic differentiation between wild and domestic Rangifer with long traditions of intentional interbreeding. Ecology and Evolution. 2017;7(17):6790–6802. DOI: https://doi.org/10.1002/ece3.3230
45. Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Kramarenko A. S., Layshev K. A., Romanenko T. M., Solov’eva A. D., Deniskova T. E., Kostyunina O. V., Brem G., Zinovieva N. A. Study of the allele pool and the degree of genetic introgression of semidomesticated and wild populations of reindeer (Rangifer tarandus L., 1758) using microsatellites. Agricultural Biology. 2016;51:811–834. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2016.6.811eng
46. Svishcheva G. R., Babayan O. V., Sipko T. P., Kashtanov S. N., Kholodova M. V., Stolpovsky Y. A. Genetic differentiation between coexisting wild and domestic reindeer (Rangifer tarandus L. 1758) in Northern Eurasia. Genetic Resources. 2022;3(6):1–14. URL: https://www.genresj.org/index.php/grj/article/view/genresj.UYML5006
47. Røed K. H., Flagstad O., Nieminen M., Holand O., Dwyer M. J., Røv N., Vilà C. Genetic analyses reveal independent domestication origins of Eurasian reindeer. Proceedings of the Royal Society B. Biological Sciences. 2008;275(1645):1849–1855. DOI: https://doi.org/10.1098/rspb.2008.0332
48. Colson K. E., Mager K. H., Hundertmark K. J. Reindeer introgression and the population genetics of caribou in southwestern Alaska. Journal of Heredity. 2014;105(5):585–596. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esu030
49. Klütsch C. F., Manseau M., Trim V., Polfus J., Wilson P. J. The eastern migratory caribou: the role of genetic introgression in ecotype evolution. Royal Society Open Science. 2016;3(2):150469. DOI: https://doi.org/10.1098/rsos.150469
50. Weckworth B. V., Musiani M., McDevitt A. D., Hebblewhite M., Mariani S. Reconstruction of caribou evolutionary history in Western North America and its implications for conservation. Molecular Ecology. 2012;21(14):3610–3624. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2012.05621.x
51. Доцев А. В., Романенко Т. М., Харзинова В. Р., Соловьева А. Д., Лайшев К. А., Брем Г., Зиновьева Н. А. Фенотипические и генотипические особенности популяций северного оленя ненецкой породы. Сельскохозяйственная биология. 2017;52(6):1175–1183. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.6.1175rus EDN: YLSVDD
52. Kharzinova V. R., Karpushkina T. V., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Romanenko T. M., Brem G., Zinovieva N. A. 213 Association of microsatellite profile with phenotypic traits of semi-domesticated reindeer. Journal of Animal Science. 2017;95(Suppl. 4):105. DOI: https://doi.org/10.2527/asasann.2017.213
53. Dotsev A. V., Kharzinova V. R., Romanenko T. M., Brem G., Nikitkina E. V., Zinovieva N. A. PSVIII-22 Microsatellite-based heterozygosity fitness correlations in reindeer. Journal of Animal Science. 2019;97(Supp. 3):266. DOI: https://doi.org/10.1093/jas/skz258.541
54. Thompson L. M., Klütsch C. F. C., Manseau M., Wilson P. J. Spatial differences in genetic diversity and northward migration suggest genetic erosion along the boreal caribou southern range limit and continued range retraction. Ecology and Evolution. 2019;9(12):7030–7046. DOI: https://doi.org/10.1002/ece3.5269
55. Peeters B., Le Moullec M., Raeymaekers J. A. M., Marquez J. F., Røed K. H., Pedersen Å. Ø., Veiberg V., Loe L. E., Hansen B. B. Sea ice loss increases genetic isolation in a high Arctic ungulate metapopulation. Global change biology. 2020;26(4):2028–2041. DOI: https://doi.org/10.1111/gcb.14965
56. Muneer P. M. A., Gopalakrishnan A., Shivanandan R., Basheer V. S., Ponniah A. G. Genetic variation and phylogenetic relationship between two species of yellow catfish, Horabagrus brachysoma and H. nigricollaris (Teleostei: Horabagridae) based on RAPD and microsatellite markers. Molecular Biology Reports. 2011;38(4):2225–2232. DOI: https://doi.org/10.1007/s11033-010-0352-3
57. Sudheer P. D. V. N., Mastan S. G., Rahman H., Ravi Prakash C., Singh S., Reddy M. P. Cross species amplification ability of novel microsatellites isolated from Jatropha curcas and genetic relationship with sister taxa: cross species amplification and genetic relationship of Jatropha using novel microsatellites. Molecular Biology Reports. 2011;38(2):1383–1388. DOI: https://doi.org/10.1007/s11033-010-0241-9
58. Kim K. S., Min M. S., An J. H, Lee H. Cross-species amplification of Bovidae microsatellites and low diversity of the endangered Korean goral. Journal of Heredity. 2004;95(6):521–525. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esh082
59. Yasodha R., Ghosh M., Sumathi R., Gurumurthi K. Cross-species amplification of eucalyptus SSR markers in Casuarinaceae. Acta Botanica Croatica. 2005;64(1):115–120. URL: https://hrcak.srce.hr/file/5717
60. Котова С. А., Заблоцкая Е. А., Спивак Е. А., Рыбакова В. И., Недзвецкая Д. Э., Цыбовский И. С. Перекрестная амплификация микросателлитных ДНК маркеров в исследовании полиморфизма видов отряда Artiodactyla (парнокопытные). Молекулярная и прикладная генетика. 2017;22:25–33. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=29328279 EDN: YRUOHH
61. Engel S. R., Linn R. A., Taylor J. F., Davis S. K. Conservation of microsatellite loci across species of Artiodactyls: implications for population studies. Journal of Mammalogy. 1996;77(2):504–518. DOI: https://doi.org/10.2307/1382825
62. Wilson G. A., Strobeck C., Wu L., Coffin J. W. Characterization of microsatellite loci in caribou Rangifer tarandus, and their use in other artiodactyls. Molecular ecology. 1997;6(7):697–699. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1997.00237.x
63. Røed K. H., Midthjell L. Microsatellites in reindeer, Rangifer tarandus, and their use in other Cervids. Molecular ecology. 1998;7(12):1773–1776. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1998.00514.x
64. Cronin M. A., MacNeil M. D., Patton J. C. Mitochondrial DNA and microsatellite DNA variation in domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) and relationships with wild caribou (Rangifer tarandus granti, Rangifer tarandus groenlandicus, and Rangifer tarandus caribou). Journal of Heredity. 2006;97(5):525–530. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esl012
65. Mager K. H., Colson K. E., Hundertmark K. J. High genetic connectivity and introgression from domestic reindeer characterize northern Alaska caribou herds. Conservation Genetics. 2013;14(6):1111–1123. DOI: https://doi.org/10.1007/s10592-013-0499-2
66. Jepsen B. I., Siegismund H. R., Fredholm M. Population genetics of the native caribou (Rangifer tarandus groenlandicus) and the semi-domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) in Southwestern Greenland: evidence of introgression. Conservation Genetics. 2002;3:401–409. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1020523303815
67. Kharzinova V. R., Gladyr E. A., Fedorov V. I., Romanenko T. M., Shimit L. D., Layshev K. A., Kalashnikova L. A., Zinovieva N. A. Development of multiplex microsatellite panel to assess the parentage verification in and differentiation degree of reindeer populations (Rangifer tarandus). Agricultural Biology. 2015;50(6):756–765. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2015.6.756eng
68. Кошкина О. А., Соловьева А. Д., Денискова Т. Е., Харзинова В. Р., Зиновьева Н. А. Изучение генетического разнообразия домашних и диких популяций северного оленя (Rangifer tarandus L., 1758) с использованием маркеров ядерного и митохондриального геномов. Сельскохозяйственная биология. 2022;57(6):1101–1116. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.6.1101rus EDN: KOSGBP
69. Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Fedorov V. I., Brem G., Zinovieva N. A. Estimation of biodiversity and population structure of Russian reindeer (Rangifer tarandus) breeds inhabiting Northeastern Siberia (Republic of Sakha – Yakutia) using microsatellite markers. Acta Fytotechnica et Zootechnica. 2016;19(3):87–92. DOI: https://doi.org/10.15414/afz.2016.19.03.87-92
70. Соловьева А. Д., Харзинова В. Р., Денискова Т. Е., Зиновьева Н. А. Исследование генетической структуры домашних и диких северных оленей Республики Саха (Якутия) с использованием STR-анализа. Генетика и разведение животных. 2022;(3):5–11. DOI: https://doi.org/10.31043/2410-2733-2022-3-5-11 EDN: DAWAMX
71. Романенко Т. М., Харзинова В. Р., Лайшев К. А. Сравнительная характеристика микропопуляций северных оленей ненецкой породы малоземельской тундры НАО. Генетика и разведение животных. 2020;(2):37–43. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=43162320 EDN: HFQSLZ
72. Николаев С. В., Матюков В. С., Филатов А. В. Изменения микросателлитного профиля в опытном стаде северных оленей ненецкой породы. Международный вестник ветеринарии. 2023;(3):275–283. DOI: https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2023.3.275 EDN: AGZUPJ
73. Харзинова В. Р., Кудрявцев А. В., Семерикова М. Н., Зиновьева Н. А. Изучение популяционной структуры и генетического разнообразия чукотской породы северного оленя на основе анализа микросателлитов. Достижения науки и техники АПК. 2023;37(9):87–92. DOI: https://doi.org/10.53859/02352451_2023_37_9_87 EDN: VBESRE
74. Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Fedorov V. I., Shimit L. D., Romanenko T. M., Senchik A. V., Sergeeva O. K., Goncharov V. V., Layshev K. A., Yuzhakov A. A., Brem G., Zinovieva N. A. PSIII-15 Genetic variability of Russian domestic reindeer populations (Rangifer Tarandus) by microsatellites. Journal of Animal Science. 2020;98(Suppl.4):237–238. DOI: https://doi.org/10.1093/jas/skaa278.435
75. Баранова А. И., Холодова М. В., Сипко Т. П. Генетическая структура дикого северного оленя (Rangifer tarandus) России на основании полиморфизма микросателлитных локусов. Актуальные вопросы современной зоологии и экологии животных: мат-лы Всероссийской научной конференции, посвященной 70-летнему юбилею кафедры «Зоология и экология» Пензенского государственного университета и памяти профессора В. П. Денисова (1932–1997). Пенза: Пензенский государственный университет; 2016. С. 21. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?edn=xexeel&ysclid=lwaieypffc136387386 EDN: XEXEEL
76. Холодова М. В., Баранова А. И. Изучение генетического разнообразия северного оленя европейской части России, значение результатов для теории и практики. Лесной северный олень проблемы и перспективы сохранения на европейском севере России: сб. ст. Под общ. ред. Н. Шматкова. М.: Всемирный фонд дикой природы (WWF), 2021. С. 17–19. DOI: https://doi.org/10.47364/9785604736210_17 EDN: FJGEIX
77. Додохов В. В., Павлова Н. И., Калашникова Л. А. Полиморфизм микросателлитных локусов ДНК у оленей чукотской породы. Аграрный научный журнал. 2020;(9):49–53. DOI: https://doi.org/10.28983/asj.y2020i9pp49-53 EDN: THWKGL
78. Филиппова Н. П., Корякина Л. П., Павлова А. И. Изучение аллелофонда эвенской породы северного оленя по локусам трансферрина и микросателлитов. Генетика и разведение животных. 2020;(1):44–49. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=42672645 EDN: FJVBWW
79. Семина М. Т., Каштанов С. Н., Бабаян О. В., Лайшев К. А., Южаков А. А., Воронкова В. Н., Николаева Э. А., Свищёва Г. Р. Анализ генетического разнообразия и популяционной структуры ненецкой аборигенной породы северных оленей на основе микросателлитных маркеров. Генетика. 2022;58(8):954–966. DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675822080069 EDN: TLCNGQ
80. Столповский Ю. А., Бабаян О. В., Каштанов С. Н., Пискунов А. К., Сёмина М. Т., Холодова М. В., Лайшев К. А., Южаков А. А., Романенко Т. М., Лисичкина М. Г., Дмитриева Т. И., Етылина О. В., Прокудин А. В., Свищёва Г. Р. Генетическая оценка пород северного оленя (Rangifer tarandus) и их дикого предка с помощью новой панели STR-маркеров. Генетика. 2020;56(12):1410–1426. DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675820120139 EDN: YCPKAN
Рецензия
Для цитирования:
Харзинова В.Р., Зиновьева Н.А. Применение микросателлитов в популяционно-генетических исследованиях северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор). Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2024;25(4):525–537. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.4.525-537
For citation:
Kharzinova V.R., Zinovieva N.A. Application of microsatellites in population genetic studies of reindeer (Rangifer tarandus) (review). Agricultural Science Euro-North-East. 2024;25(4):525–537. (In Russ.) https://doi.org/10.30766/2072-9081.2024.25.4.525-537
Просмотров:
510
Послать статью по эл. почте 