Динамика концентрации прогестерона в крови крупного рогатого скота при применении препарата Прогестамаг^®

Цель исследований – изучить динамику концентрации прогестерона в крови телок (n = 10) и лактирующих коров (n = 10) с признаками гипофункции яичников после однократного внутримышечного введения препарата Прогестамаг® в дозе 10 мл. Экспериментальная работа выполнена на животных айрширской породы. Гипофункцию яичников устанавливали методом ультразвуковой сонографии по отсутствию желтых тел и крупных фолликулов. Для определения уровня прогестерона до введения средства и в течение 14 дней после у животных брали венозную кровь. Концентрацию гормона оценивали иммуноферментативным методом. При расчете фармакинетических показателей определяли максимальную концентрацию вещества (Cmax), время наступления максимальной концентрации (Тmax), период полувыведения (Т1/2), константу элиминации (Kelim). На основании полученных данных линейным методом рассчитывали дозозависимые изменения концентрации прогестерона. Установлено, что после однократного введения препарата происходил резкий подъем уровня исследуемого стероида. У телок Тmax наблюдали на вторые сутки, при этом Сmax составила 42,88 нмоль/л, Kelim – 0,0083, Т1/2 – 83,3 ч. Достоверно высокая концентрация гормона прослеживалась в течение 9 дней. Пиковое содержание прогестерона у лактирующих коров также проявлялось через 48 часов, при этом Сmax составила 24,96 нмоль/л, Kelim – 0,0079, а Т1/2 – 88,1 ч. Дозозависимые расчеты показали, что для 7–10-дневных схем стимуляции половой функции у циклирующих телок терапевтический диапазон находится в пределах от 1 до 4 мл, у коров – от 2 до 7 мл препарата. Для лечения гипофункции гонад обоснованной дозировкой телкам можно считать объем от 2 до 6 мл, а лактирующим животным – от 4 до 7 мл средства. Таким образом, Прогестамаг® обладает умеренно пролонгированным действием, однако постепенное снижение уровня стероида в течение длительного времени может препятствовать достижению ребаунд-эффекта.

1. Ширяев Г. В., Ларкина Т. А., Никитин Г. С., Притужалова А. О., Ширяева Н. А., Курочкин А. А., Рыбаков М. А., Якимов Ф. Д. Динамика концентрации кисспептина, эстрадиола и прогестерона у высокопродуктивных коров в период глубокой стельности и после отела в связи с нарушениями в энергообмене. Молочное и мясное скотоводство. 2024;(2):17–20. DOI: https://doi.org/10.33943/MMS.2024.74.32.004 EDN: OXNVTS

2. Михалёв В. И., Бутко В. А., Моргунова В. И., Чусова Г. Г. Морфо-биохимические показатели крови коров при различном характере течения беременности и уровне молочной продуктивности. Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2018;(3):91–95. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=35630769 EDN: XZTXXN

3. Семиволос А. М., Семиволос С. А., Володина М. А., Агольцов В. А., Падило Л. П. Препарат галапан при гипофункции яичников у коров. Аграрный научный журнал. 2023;(11):161–164. DOI: https://doi.org/10.28983/asj.y2023i11pp161-164 EDN: UTGZWA

4. Нежданов А. Г., Митина А. О., Синёва А. М., Дюльгер Г. П., Седлецкая Е. С., Лободин К. А., Лукина В. А. Послеродовая гипофункция яичников у молочных коров и гормональные методы их терапии. Ветеринария. 2018;(7):39–45. DOI: https://doi.org/10.30896/0042-4846.2018.21.7.39-45 EDN: UTSSFE

5. Симонов П. Г., Алиев А. Ю., Федотов С. В., Фуад С. Совершенствование синхронизации половых циклов у коров в условиях интенсивного производства. Ветеринария Кубани. 2024;(4):20–22. DOI: https://doi.org/10.33861/2071-8020-2024-4-20-22 EDN: RPLFRM

6. Никитин В. В., Племяшов К. В., Корочкина Е. А. Диаметр овуляторного фолликула, индуцированного экзогенным ГнРГ, как предиктор репродуктивного статуса высокопродуктивных коров. Ветеринария. 2024;(5):32–35. DOI: https://doi.org/10.30896/0042-4846.2024.27.5.32-35 EDN: GDVMCM

7. Нежданов А. Г., Михалев В. И., Скориков В. Н., Панфилова А. О. Эффективность гормональной коррекции воспроизводительной способности коров при гипофункции яичников. Вопросы нормативноправового регулирования в ветеринарии. 2014;(3):124–127. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=22149093 EDN: SQRXHX

8. Седлецкая Е. С., Дюльгер Г. П. Клиническая и ультразвуковая оценка терапевтической эффективности овулина при фолликулярных кистах яичников у коров. Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2011;(1):9–22.

9. Николаев С. В. Фармакокинетика 17-гидроксипрогестерона капроата в организме лактирующих коров. Ветеринария. 2022;(5):54–58. DOI: https://doi.org/10.30896/0042-4846.2022.25.5.54-57 EDN: UTVOVA

10. Торшин И. Ю., Громова О. А., Рудаков К. В. Сродство дидрогестерона и других прогестинов к эстрогеновым, прогестероновым и другим типам стероидных рецепторов. Гинекология. 2011;13(1):23–28. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=16284593 EDN: NSJGIZ

11. Николаев С. В. Определение селективных модуляторов прогестеронового рецептора в плазме крови методом ВЭЖХ-МС/МС. Международный вестник ветеринарии. 2022;(2):140–147. DOI: https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.2.140 EDN: RLBFRM

12. Минин А. В., Филатов А. В. Утеротоническая активность препарата Рутоцин при применении высокопродуктивным свиноматкам в послеродовой период. Ветеринария. 2023;(9):42–45. DOI: https://doi.org/10.30896/0042-4846.2023.26.9.42-45 EDN: BPWXTK

13. Kozicki L. E., Weber H. S., Bacher H. L., Ramos I. S., Gaievski F. R., Schaus M. V. et al. Determination of progesterone concentration during the estrous cycle in dairy cows using a chemiluminescence assay. Revista Academica de Ciencia Animal. 2018;16:e16006. DOI: https://doi.org/10.7213/1981-4178.2018.16006