Preview

Аграрная наука Евро-Северо-Востока

Расширенный поиск

Гидроэпидемиологические аспекты индикации в моллюсках возбудителей инфекционных болезней (обзор)

https://doi.org/10.30766/2072-9081.2019.20.5.427-436

Полный текст:

Аннотация

В статье представлено обоснование использования методов гидроэпидемиологии при оценке риска распротранения инфекционных болезней животных, связанных с водой. Авторы выделили шесть  гидроэпидемиологических групп болезней: 1) вода является средой накопления возбудителя; 2) вода является  средой передачи попавшего возбудителя болезни без его биологического накопления; 3) цикл развития возбудителя болезни непосредственно связан с водой и водными организмами; 4) болезни, передающиеся насекомыми, цикл развития которых связан с водой; 5) болезни, передающиеся водными и околоводными позвоночными животными; 6) болезни обитателей водоёмов. При этом показано, что водные организмы-фильтраторы (моллюски) аккумулируют в себе различные патогенные микроорганизмы, являющиеся возбудителями инфекционных болезней как человека, так и животных. Таким образом, моллюски могут служить тест-объектом гидроэпидемиологических исследований при оценке риска распространения инфекционных болезней в акваториях и околоводном комплексе, а также при непосредст-венном их употреблении в пищу.

Об авторах

А. А. Блохин
Нижегородский научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Россия

кандидат вет. наук, ведущий научный сотрудник отдела эпизоотологии и оценки риска, связанного со здоровьем животных

ул. Ветеринарная, д. 3, г. Нижний Новгород, Российская Федерация, 603098

and.bloxin2010@yandex.ru



Н. Н. Торопова
Нижегородский научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Россия

младший научный сотрудник отдела эпизоотологии и оценки риска, связанного со здоровьем животных

ул. Ветеринарная, д. 3, г. Нижний Новгород, Российская Федерация, 603098



О. И. Захарова
Нижегородский научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Россия

научный сотрудник отдела эпизоотологии и оценки риска, связанного со здоровьем животных

ул. Ветеринарная, д. 3, г. Нижний Новгород, Российская Федерация, 603098

 



О. А. Бурова
Нижегородский научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Россия

научный сотрудник отдела эпизоотологии и оценки риска, связанного со здоровьем животных

ул. Ветеринарная, д. 3, г. Нижний Новгород, Российская Федерация, 603098

burovaolga@list.ru



Список литературы

1. Martinezmmanzanares E., Morinigo M. A., Castro D., Balebona M. C., Sanchez J. M., Borrego J. J. Influ-ence of the fecal pollution of marine-sediments on the microbial content of shellfish. Marine Pollution Bulletin. 1992;24 (7):342-349.

2. Olalemi A., Purnell S., Caplin J., Ebdon J, Taylor H. The application of phage-based faecal pollution markers to predict the concentration of adenoviruses in mussels (Mytilusedulis) and their overlying waters. Journal of Applied Microbiology. 2016;121(4):1152-1162. DOI: https://doi.org/10.1111/jam.13222

3. Лихачёва Е. В., Лаженцева Л. Ю. Характеристика микрофлоры зарывающихся двустворчатых мол-люсков залива Петра Великого. Актуальные проблемы технологии живых систем: сб. материалов I Между-нар. научн.-техн. конф. молодых ученых 21-23 декабря 2005 года. Владивосток: Тихоокеан. гос. экон. ун-т, 2005. С. 30-32.

4. Rondelaund Daniel, Barthe Dominigue. Observations epidemiologigues sur liridovirose de Lymnaea truncatula, mollusgue vecteur de Fasciola hepatica. C. r. Acad. Sci, Ser. 3. 1992;314(13):609-612.

5. Haiwen Xie, Hongshan Hao, Nan Xu, Xinxiu Liang, Dingxue Gao, Yaru Xu, Yue Gao, Huchun Tao, Minghung Wong. Pharmaceuticals and personal care products in water, sediments, aquatic organisms, and fish feeds in the Pearl River Delta: Occurrence, distribution, potential sources, and health risk assessment. Science of the total Environment. 2019;659:230-239. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.12.222

6. Walsh Michael G., Webb Cameron. Hydrological features and the ecological niches of mammalian hosts de-lineate elevated risk for Ross River virus epidemics in anthropogenic landscapes in Australia. ParasItes & Vec-tors.2018;11:192. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-018-2776-x

7. Hohl Alexander, Vaclavik Tomas, Meentemeyer Ross K. Go with the flow: geospatial analytics to quantify hydrologic landscape connectivity for passively dispersed microorganisms. International Journal of Geographical Information Sclence. 2014;28(8):1626-1641. DOI: https://doi.org/10.1080/13658816.2013.854900

8. Githeko A. K., Ototo E. N., Yan Guiyun. Progress towards understanding the ecology and epidemiology of malaria in the western Kenya highlands: Opportunities and challenges for control under climate change risk. Acta Tropica. 2012;121 (1):9-25. DOI: https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2011.10.002

9. Morris George Paterson, Reis Stefan, Beck Sheila Anne, Fleming Lora Elderkin, Adger William Neil, Ben-ton Timothy Guy, Depledge Michael Harold. Scoping the proximal and distal dimensions of climate change on health and wellbeing. Environmental Health. 2017;16(SI):69-76. DOI: https://doi.org/10.1186/s12940-017-0329-y

10. Perez-Saez Javier, Mande Theophile, Larsen Joshua. Classification and prediction of river network ephem-erality and its relevance for waterborne disease epidemiology. Advances in Water Resources.2017;110:263-278. DOI: https://doi.org/10.1016/j.advwatres.2017.10.003

11. Topic Popovic N., Benussi Skukan A., Dzidara P., Coz-Rakovac R., Strunjak-Perovic I., Kozacinski L., Jadan M., Brlek-Gorski D. Microbiological quality of marketed fresh and frozen seafood caught off the Adriatic coast of Croatia. Veter. Med. 2010;55(5):233-241. DOI: https://doi.org/10.17221/2997-VETMED

12. Сюрин В. Н., Самулейко А. Я., Соловьёв Б. В., Фомина Н. В. Вирусные болезни животных. М.: ВНИТИБП, 1998. 928 с.

13. He Ke, Hain Ethan, Timm Anne, Tarnowskiet Mitchell, Blaney Lee. Occurrence of antibiotics, estrogenic hormones, and UV-filters in water, sediment, and oyster tissue from the Chesapeake Bay. Science of the total Envi-ronment. 2019;650:3101-3109. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.10.021

14. Gyawali Pradip, Croucher Dawn, Ahmed Warish, Devane Megan, Hewitt Joanne. Evaluation of pepper mild mottle virus as an indicator of human faecal pollution in shellfish and growing waters.Waterresearch. 2019;154:370-376. DOI: https://doi.org/10.1016/j.watres.2019.02.003

15. Bonnail Estefania, Riba Inmaculada, Alessandra Aloisede Sebara, Ángel Del Valls T. Sediment quality as-sessment in the Guadalquivir River (SW, Spain) using caged Asian clams: A biomarker field approach. Science of the total Environment. 2019;650(2):1996-2003. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.09.346

16. Carella F., Carrasco N., Andree K. B., Lacuesta B., Furones D., De Vico G. Nocardiosis in Mediterranean bivalves: First detection of Nocardia crassostreae in a new host Mytilus galloprovincialis and in Ostreaedulisfrom the Gulf of Naples (Italy). J. Invertebr. Pathol. 2015;114:324-328. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24140500

17. Егорова И. Ю., Селянинов Ю. О., Воронин М. С. Мониторинг листерий в водной фауне Иваньков-ского водохранилища. Ветеринария. 2009;(8):29-31. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=12930954

18. Demesquita M. M., Evison L. M, West P. A. Removal of fecal indicator bacteria and bacteriophages from the common mussel (Mytilus-Edulis) under artificial depuration conditions. Journal of Applied Bacteriology. 1991;70 (6):495-501.

19. McDowell W. G., Benson A. J., Byers J. E. Climate controls the distribution of a widespread invasive species: implications for future range expansion. Freshwater Biology. 2014;59(4):847-857. DOI: https://doi.org/ 10.1111/fwb.12308

20. Winder M., Jassby A. D., Mac Nally R. Synergies between climate anomalies and hydrological modifications facilitate estuarine biotic invasions. Ecology Letters. 2011;14(8):740-757. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2011.01635.x

21. Ferreira-Rodriguez N., Fandino L., Pedreira A., Pardo I. First evidence of asymmetric competition between the non-native clam Corbiculafluminea and the native freshwater mussel Uniodelphinus during a summer heat wave. Aquaticc Conservation-Marine and Freshwater Ecosystems. 2018;28 (5):1105-1113. DOI: https://doi.org/ 10.1002/aqc.2964

22. Ferreira-Rodriguez N., Fernandez I., Cancela M. L., Pardo I. Multibiomarker response shows how native and non-native freshwater bivalves differentially cope with heat-wave events. Aquatic Conservation-Marine and Freshwater Ecosystems.2018;28 (4):934-943. DOI: https://doi.org/10.1002/aqc.2884

23. Алексеева Н. Фасциолёзы сельскохозяйственных животных. Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2008;(6):15-18.

24. Горохов В. В. Вода – фактор передачи инвазии при гельминтозах. Ветеринария. 2004;(10):4-5.

25. Сазанов А. М. Роль человека в эпизоотологии и эпидемиологии фасциолеза. Гельминтозоонозы – меры борьбы и профилактика: Тез. докл. науч. конф. 4-5 окт. 1994. М., 1994. С. 140-142.

26. Горчаков В. В., Душкин В. А., Скира В. Н. Методические рекомендации по применению биологиче-ских методов профилактики фасциолёза. Н. Новгород, 2005. 38 с.

27. Горчаков В. В., Воротников В. П. Пастбищная профилактика фасциолёза: растительный моллюско-цид из аира обыкновенного. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2015;(6):60-64. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=24484213

28. Горчаков В. В., Косорлукова З. Я. Моллюскоцидные свойства дуба обыкновенного. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2017;(6):55-58. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=32375875

29. Bostoen K., Kolsky P., Hunt C. Improving urban water and sanitation services: healt, acces and boundaries. 2007. 235 р.

30. Gatto Marino, Mari Lorenzo, Bertuzzo Enrico, Casagrandi Renato, Righetto Lorenzo, Rodriguez-Iturbe Ignacio, Rinaldo Andrea. Generalized reproduction numbers and the prediction of patterns in waterborne dis-ease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.2012;109 (48):19703-19708. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1217567109

31. Грипп кур (классическая чума птиц, экссудативный тиф, брауншвейгская болезнь кур). Россельхознадзор. Эпизоотическая ситуация. [Электронный ресурс] Режим доступа: http://www.fsvps.ru/ fsvps/iac/ illness/flu.html (дата обращения: 23.05.2019).

32. Gallardo B., Aldridge D. C. Inter-basin water transfers and the expansion of aquatic invasive species. Water Research.2018;143:282-291. DOI: https://doi.org/10.1016/j.watres.2018.06.056

33. Paganelli D., Pandolfi A., Sconfietti R., Marchini A., Vilizzi L. Potential invasiveness by non-indigenous macrozoobenthos in the secondary hydrographic system of a temperate-climate river catchment. Ecological Indica-tors.2018;88:274-281. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2018.01.037

34. Chang-Ho Kang, Yujin Shin, Seok Cheol Jang, Hong Sik Yu, Su Kyung Kim, Sera An, Kunba-wui Park. Characterization of Vibrioparahaemolyticus isolated from oysters in Korea: Resistance to various antibiotics and prevalence of virulence genes. MARINEPOLLUTIONBULLETIN. 2017;118(1-2):261-266. DOI: https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2017.02.070

35. Мягков А. С., Алабугина Т. В. Биология, промысел и ветеринарно-санитарная экспертиза моллюсков. Ветеринария. 2003;(8):46-48.

36. Лагуткина Л. Ю., Пономарёв С. В. Органическая аквакультура как перспективное направление развития рыбохозяйственной отрасли (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2018;(2(53)):326-336. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.2.326rus

37. Ендоренко П. Эпизоотология фасциолеза. Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2008;(6):18-22.

38. Hellmér M., Paxéus N., Magnius L., Enache L., Arnholm B., Johansson A., Bergström T., Norder H. Detection of Pathogenic Viruses in Sewage Provided Early Warnings of Hepatitis A Virus and Norovirus Outbreaks. Schaffner DW, ed. Applied and Environmental Microbiology. 2014;80(21):6771-6781. DOI: https://doi.org/10.1128/AEM.01981-14

39. Cleary Daniel F. R., Becking Leontine E., Polonia Ana R. M., Freitas Rossana M., Gomes Newton C. M. Composition and predicted functional ecology of mussel-associated bacteria in Indonesian marine lakes. Antonie Vanleeuwenhoek International Journal of General and Molecular Microbiology. 2015;107 (3):821-834. DOI: https://doi.org/10.1007/s10482-014-0375-1

40. Dore W. J., Henshilwood K., Lees D. N. Evaluation of F-specific RNA bacteriophage as a candidate hu-man enteric virus indicator for bivalve molluscan shellfish. Applied and Environmental Microbiology. 2000;66 (4):1280-1285. DOI: https://doi.org/10.1128/AEM.66.4.1280-1285.2000

41. Bighiu Maria Alexandra, Halden Anna Norman, Goedkoop Willem, Ottoson Jakob. Assessing microbial contamination and antibiotic resistant bacteria using zebra mussels (Dreissena polymorpha). Science of the total Environment.2019;650 (2):2141-2149. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.09.314 42. Olsen A., Frankena K., Bodker R., Toft N., Thamsborg S. M., Enemark H. L., Halasa T. Prevalence, risk factors and spatial analysis of liver fluke infections in Danish cattle herds.Parasites & Vectors. 2015;8:160. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-015-0773-x

42. Zhang Zhiguo, Ding Sufang, Wang Jie, Qiu Bingsheng, Pei Meiyun. New arenavirus the causative agent of plague Hyrio psiscmingii. Actamicrobiol. 1987;27(2):116-120.

43. Bemiss John A., Logan Margaret M., Sample Jennifer D., Richards Gary P. A method for the enumeration of poliovirus in selected molluscan shellfish. J. Virol. Meth. 1989;26(2):209-218.

44. Christine M. Nicholson, Gillian D. Lewis, Margaret W. Loutit. Survey of Human pathogenic Bacteria and Viruses in Cocklt beds at Otakou, Otago Harbor, New-Zealand. New Zealand Journal of Marine and Freshwater Research. 1989;23(4):529-532. DOI: https://doi.org/10.1080/00288330.1989.9516389

45. Alavandi S. V., Poornima M. Viral Metagenomics: A Tool for Virus Discovery and Diversity in Aquaculture.Indian journal of virology: an official organ of Indian Virological Society. 2012;23(2):88-98. DOI: https://doi.org/10.1007/s13337-012-0075-2

46. Круглов Н. Д. Моллюски семейства прудовиков (Lumnae idea Gastropoda Pulmonata) Европы и Се-верной Азии. Смоленск: Изд-во СГПУ, 2005. 507 с.

47. Carlos J. A. Campos, David N. Lees. Environmental Transmission of Human Noroviruses in Shellfish Waters. Appl Environ Microbiol. 2014. Jun; 80 (12): 3552-3561. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4054135/

48. Vsemirnaya organizatsiya zdravookhraneniya. Ofitsial'nyy sayt. Publikatsii. [World Health Organization. Offi-cial site. Publications]. Available at: http://www.euro.who.int/ru/publications (accessed: 7.05.2019).

49. Françoise S. Le Guyader, Sylvain Parnaudeau, Robert L. Detection and Quantification of Noroviruses in Shell-fish. Appl Environ Microbiol. 2009. Feb; 75(3):618-624. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2632116/

50. Bigoraj E., Chrobocinska M., Kwit E. Norovirus contamination of bivalve molluscs as a cause of gastroen-teritis. Med. Weter.2012;68(4):210-213. URL: https://www.researchgate.net/publication/287914886

51. Michalski M., Osek J. Contamination of raw bivalve molluscs available in Poland between 2009 and 2013 with marine biotoxins. J Vet Res, 2016; 60: 447-451. DOI: https://doi.org/10.1515/jvetres-2016-0067

52. Mohan V., Rawat Sh., Lokes K. M., Mohan H. V., Avinash Reddy D., Kumar A., Bhilegaonkar K. N. Com-parison of three methods for concentration of rotavirus from artificially spiked shell fish samples. Veterinary World. 2014;7(7):463-466. DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2014.463-466

53. Mohan V., Rawat S., Lokesh K. M., Mohan H. V., Reddy A., Kumar A., Bhilegaonkar K. N. Prevalence of Rotavirus in shellfish from Southern Kerala. Veterinary World. 2014;7(10):821-824. DOI: https://doi.org/10.14202/ vetworld.2014.821-824

54. Munang’andu H. M., Mugimba K. K., Byarugaba D. K., Mutoloki S., Evensen O. Current Advances on Vi-rus Discovery and Diagnostic Role of Viral Metagenomics in Aquatic Organisms.Frontiers in Microbiology. 2017;8:406. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00406

55. Mills A. M., Ward M. E., Heyl T. P., Van Dover C. L. Parasitism as a potential contributor to massive clam mortality at the Blake Ridge Diapir methane-hydrate seep. Journal of the Marine Biological Association of the Unit-ed Kingdom. 2005;85 (6):1489-1497. DOI: https://doi.org/10.1017/S0025315405012683

56. Rodrigues Clara F., Webster Gordon, Cunha Marina R., Duperron Sébastien, Weightman Andrew J. Chemosynthetic bacteria found in bivalve species from mud volcanoes of the Gulf of Cadiz. Fems Microbiology Ecology.2010;73 (3):486-499. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2010.00913.x

57. Obbard D. J., Dudas G. The genetics of host–virus coevolution in invertebrates. Current Opinion in Virolo-gy. 2014; 8:73-78. DOI: https://doi.org/10.1016/j.coviro.2014.07.002

58. Bullock G. L., Conroy D. A., Snieszko S. F. Bacterial diseases of fishes. T. F. H. Publications. Neptune City. New Jersey. 1971. 285 р.

59. Microbiologists meet do defeat waterborne parasite. New Sci. 1989;122:1658. 22 р.

60. Graham Alastair. Gastropoda. Origin Major Invertebrate Groups. Proc. Symp. 1978, Londone. 1979. pp. 359-365.

61. Watkins J., Marcola Barbara H. Bacterial recovery from water, sewage and sewage effluents. Recovery of pathogens from sewage and wastewater. Revival Injures Microbes, Londone. 1984. 377 р.

62. Gomez-Leon J., Villamil L., Lemos M. L., Novoa B., Figueras A. Isolation of Vibrio alginolyticus and Vibrio splendidus from aquacultured carpet shell clam (Ruditapes decussatus) larvae associated with massmortalities. Appl. Environ. Microbiol. 2005;71:98-104. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15640176 63. Nishiguchi M. K. Temperature Affects Species Distribution in Symbiotic Populations of Vibrio spp. Applied and Environmental Microbiology. 2000;66(8):3550-3555. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10919820

63. Dubert J, Barja J. L., Romalde J. L. New Insights into Pathogenic Vibrios Affecting Bivalves in Hatcheries: Present and Future Prospects. Frontiers in Microbiology. 2017;8:762. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00762

64. Dawkins G., Luxton M., Bishop C. Transmission of liquorice rot of carrots by slugs. J. Mollusc, Stud. 1985;51 (1):83-85.

65. Лаженцева Л. Ю. Продукты из гидробионтов в питании населения. Актуальные проблемы техноло-гии живых систем: сб. материалов I Междунар. научн.-техн. конф. молодых ученых 21-23 декабря 2005 года. Под общ. ред. Ю. Д. Шмидта. Владивосток: Тихоокеан. гос. экон. ун-т, 2005. С. 121-125.


Для цитирования:


Блохин А.А., Торопова Н.Н., Захарова О.И., Бурова О.А. Гидроэпидемиологические аспекты индикации в моллюсках возбудителей инфекционных болезней (обзор). Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2019;20(5):427-436. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2019.20.5.427-436

For citation:


Blokhin A.A., Toropova N.N., Zakharova O.I., Burova O.A. Hydro-epidemiological aspects of infectious agent indication in mollusks (review). Agricultural Science Euro-North-East. 2019;20(5):427-436. (In Russ.) https://doi.org/10.30766/2072-9081.2019.20.5.427-436

Просмотров: 91


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-9081 (Print)
ISSN 2500-1396 (Online)